標(biāo)簽蛋白分離層析親和純化介質(zhì) Ni NTA Beads 產(chǎn)品信息
Ni NTA Beads是以4%瓊脂糖凝膠為基質(zhì),通過化學(xué)方法偶聯(lián)了四配位的氮川三乙酸( NTA),螯合鎳離子( Ni2+)后,可以形成非常穩(wěn)定的八面體結(jié)構(gòu),鎳離子處于八面體的中心,這樣的結(jié)構(gòu)很有效的保護(hù)了鎳離子免受小分子的進(jìn)攻,更加穩(wěn)定。 Ni NTA Beads可以耐受一定濃度的還原劑、變性劑.
標(biāo)簽蛋白分離層析親和純化介質(zhì) Ni NTA Beads 產(chǎn)品性能
項(xiàng)目 | 性能 |
基質(zhì) | 4%瓊脂糖凝膠 |
載量 | >40 mg 6×His-tagged protein/ml介質(zhì) |
微球粒徑 | 45-165 μm |
壓力 | 0.1 MPa,1 bar |
儲(chǔ)存緩沖液 | 含20%乙醇的1×PBS |
儲(chǔ)存溫度 | 4-30℃ |
2.純化流程
2.1緩沖液的準(zhǔn)備
可使用下列拋李緩沖液,也可根據(jù)自己的使用習(xí)慣配置不同的緩沖液體系,基本原理就是低咪唑上樣,高咪唑洗脫,或者高 pH上樣,低pH洗脫。緩沖液在使用前用0.22 pm 載者0.45 μm 濾膜過濾。因?yàn)镹INTA Beads可以用于可溶蛋白和包涵體蛋白的純化,兩種方法所需緩沖液不同。具體配置方法見表3、表4和表5。
2.2樣品準(zhǔn)備
2.2.1細(xì)菌或酵母表達(dá)的蛋白
1)挑取單茵落到培養(yǎng)基中,根據(jù)載體使用說明,加入相應(yīng)濃度的誘導(dǎo)劑誘導(dǎo)相應(yīng)的時(shí)間。
2)表達(dá)結(jié)束后,將培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移到離心杯中,7,000 pm(7,500xg),離心 15 min收集菌體,然后按照菌體;Lysis Buffer=1∶10(W//)加
入Lysls Buffer,加入終濃度為1 mM的PMSF。加入(工作濃度為0.2-0.4 mg/ml,如果表達(dá)的宿主細(xì)胞內(nèi)含 pLysS 或 pLysE,可以不加),(同時(shí)也可加入其他蛋白酶抑制劑,但不能影響目的蛋白與樹脂的結(jié)合)。
3)將菌體沉淀懸浮起來,(如果菌液濃度高,也可考慮加入10 μg/ml RNaseA和5ug/mlDNase I),濕勻,放置于冰上,然后冰上超聲破碎細(xì)胞,至菌液基本保持澄清。
4)將澄清的破碎液轉(zhuǎn)移至離心管中,10,000 rpm(15,000xg),4℃離心20-30 min。取上清,置于冰上備用或-20℃保存。
2.2.2 酵母、昆蟲和哺乳細(xì)胞分泌表達(dá)可溶性蛋白
1)將細(xì)胞培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移至高心杯,5,000 pm(3,800xg),離心10 min,收集菌體得上清,如上清中不含EDTA、和還原劑等物質(zhì),即可直接加入柱子使用;如含有EDTA、和還原劑等物質(zhì),需用Lysis Buffer透析才能加入柱子。
2)對(duì)于大量體積的上清,需加入硫酸銨沉淀濃縮后,蛋白還需用Lysis Buffer透析后才能加入柱子。
2.2.3包涵體蛋白純化(變性條件)
1)將培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移到離心杯中,7,000 rpm(7,500xg),離心15min收集菌體,去掉上清。
2)按照菌體∶Lysis buffer(不含8M尿素)=1∶10(W/)將菌體懸浮起來混勻,冰浴超聲破碎。
3)將破碎液轉(zhuǎn)移至離心管中,10,000 rpm(15,000×g),4℃離心20-30min。去掉上清,步驟2和3可以重復(fù)一次。4)按照菌體∶Lysis buffer(含8M尿素)=1∶10(W/V)將包涵體懸浮起來。5)變性條件下進(jìn)行His標(biāo)簽蛋白純化,具體緩沖液配方見表4、表5。2.3NiNTABeads重力柱的裝填
1)取合適規(guī)格的重力層析柱,裝入下墊片,加入適量純水潤洗柱管和墊片,關(guān)閉下出口。
2)將NiNTABeads混合均勻,用槍頭吸取適量漿液加入至重力柱中(介質(zhì)實(shí)際體積占懸液的一半),打開下出口流干保護(hù)液。3)加入適量純水沖洗介質(zhì),待柱管中液體重力流干后,關(guān)閉下出口。
4)裝入潤洗后的上墊片,確保墊片與填料之前沒有空隙,且保持水平。
5)裝填好的重力柱可以直接加入平衡液進(jìn)行平衡,暫不使用時(shí)則加入保護(hù)液,4-30℃保存。
2.4樣品純化流程
2.4.1 孵育法純化
1)根據(jù)純化的樣品量,取適量Ni NTA Beads加入離心管中,1000 rpm離心1min,吸棄上清;也可加入重力柱中,流干保護(hù)液。
2)向離心管中加入5倍介質(zhì)體積的LysleBuffer清洗介質(zhì),1000 rpm 離心1min,吸棄上清如使用重力柱,則直接在重力柱中清洗,直接重力流干Lysis Buffer重復(fù)兩次以上。
3)加入樣品,封閉離心管或重力柱管,4℃振蕩孵育2-4h或者37℃孵育30min-2h。
4) 孵育結(jié)束后,1000 rpm離心1min,吸棄上清,或過濾收集介質(zhì),上清保留作為流穿,用于電泳鑒定。
5)用5倍介質(zhì)體積的WashBuffer清洗介質(zhì),1000rpm 離心1min 或重力柱管過濾,去除上清(注意不要吸到介質(zhì)),重復(fù)3-5次,中間建議更換新離心管。必要時(shí)可以調(diào)整咪唑的濃度進(jìn)行洗雜。
6)加入3-5倍柱體積的Eltton Buffer進(jìn)行洗脫,寬溫孵育10-15min,1000 rpm高心1mln或重力柱管收集洗脫液,可重復(fù)2-3次;
2.4.2重力柱法純化
1)將裝填好的NINTABeads重力柱用5倍柱體積LyslsBuffer進(jìn)行平衡,使填料處于與目的蛋白相同的緩沖液體系下,重復(fù)2-3次。
2)將樣品加到平衡好的重力柱中,樣品保留時(shí)間至少2 min;保證樣品和介質(zhì)充分接觸,收集流出液,可以反復(fù)上樣增加結(jié)合效率。3)用 10-15 倍柱體積的Wash Buffer 進(jìn)行洗雜、夫除非特導(dǎo)性吸附的雜蛋白,收集洗雜液。必要時(shí)可以調(diào)整咪唑的木度進(jìn)行洗先雜。
4)使用5-10倍柱體積的 Elution Buffer 洗脫,分段收集,每一個(gè)柱體積收集一管,分別檢測,既可以保證所有結(jié)合的目的蛋白被洗脫,又
可以得到高純度和高濃度的蛋白。
上述步驟介質(zhì)洗尚結(jié)束后,先用Lysis Buffer 沖洗3 倍柱體積.然后用純水沖洗5倍柱體積,再用 20%乙醇沖洗2個(gè)柱體積,然后將介質(zhì)置于2-8℃保存。2.5 SDSPAGE 檢測
將使用純化產(chǎn)品得到的樣品(包括流出組分、洗雜組分和洗脫組分)以及原始樣品使用 SDS-PAGE檢測結(jié)化效果。
3.在位清洗
當(dāng)填料使用過程中發(fā)現(xiàn)反壓過高或者填料上面出現(xiàn)明顯的污染時(shí),需要進(jìn)行在位清洗操作(Cleaning-in-Place,CIP)。建議按照下面操作去除填料上殘留的污染物,如沉淀蛋白、疏水蛋白和脂蛋白等。去除強(qiáng)疏水結(jié)合的蛋白,脂蛋白和脂類
通過使用 30%異丙醇清洗 5-10個(gè)柱體積,接觸時(shí)間為 15-20 min 可以去除此類污染物。然后,再使用 10倍柱體積的去離子水清洗。也可以選擇使用含有去污劑的酸性或堿性溶液,清洗填料2倍柱體積。例如,含有0.1-0.5%非離子去污劑的0.1M醋酸溶液,接觸時(shí)間為 1-2 h。去污劑處理后,需要使用 70%的乙醇清洗5個(gè)柱體積,以去除去污劑。最后使用 10倍柱體積的去離子水清洗。去除離子作用結(jié)合的蛋白
使用 1.5 M NaCI溶液清洗 10-15 min。然后,再使用去離子水清洗 10個(gè)柱體積。
4.填料再生
標(biāo)簽蛋白親和純化填料所帶的鎳離子不需要經(jīng)常螯合去除和重新掛鎳離子。當(dāng)填料使用過程中發(fā)現(xiàn)顏色變淺,或者填料載量明顯變低時(shí),需要進(jìn)行對(duì)填料進(jìn)行簇離子剝離和重新掛鎳離子,也就是填料再牛。將填料裝填在合適的層柱內(nèi),按照下面操作流程進(jìn)行鎳離子剝離和重新掛鎳離子。
1)使用5倍柱體積去離子水清洗填料;
2)使用5倍柱體積100 mM EDTA(pH 8.0)剝落鎳離子;
3)使用 10倍柱體積去離子水清洗填料;
4)使用0.5 M NaOH清洗5倍柱體積,停留 10-15 min;
5)使用去離子水清洗填料,直至 pH中性;
6)使用3-5倍柱體積 100mM NiSO4再生掛鎳;
7)使用10倍柱體積去離子水清洗;
填料再生后,可以立即使用,如不立即使用,需要將填料懸浮于等體積的 20%乙醇中,置于4-30°℃保存。
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